Constituintes químicos de cochlospermum regium (martius e schrank) pilger (bixaceae)
Anais do VIII Seminário de Iniciação Científica e V Jornada de Pesquisa e Pós-Graduação
UNIVERSIDADE ESTADUAL DE GOIÁS
Constituintes Químicos de Cochlospermum regium
(Martius e Schrank) Pilger (Bixaceae)
*1ANTUNES, M. N.; 2LIMA, R. S.; 2OLIVEIRA, C. R.; 2PEREIRA, A. G.;
1. Laboratório de Bioquímica e Parasitologia, Fundação de Medicina Tropical do
Tocantins (FMT-TO), Araguaína, Tocantins, 75000, BRASIL.
2. Laboratório de Pesquisa em Ciências Exatas e Tecnológicas, Universidade
Estadual de Goiás, Anápolis, Goiás, 75000, BRASIL.
*1 e *2E-mail:
[email protected] e
Palavras-Chaves: excelsina, naringenina, lignana, flavanona,
INTRODUÇÃO
1.1 Características da Família Bixaceae
Descrita por Karl Sigismund Kunth a família Bixaceae foi subordinada à
ordem Bixales e incluía apenas o gênero
Bixa. Atualmente esta família esta
subordinada à ordem Malvales, subclasse Dilleniidae e inclui além do gênero
Bixa,
os gêneros
Amoreuxia e
Cochlospermum, anteriormente pertencentes à família
Cochlospermaceae (DI STASI, 2002). Segundo Ritto e Kato (1998), Cronquist,
também considerou a família Cochlospermaceae Engler como parte da família
Bixaceae Kunth, não constituindo, portanto, uma família autônoma. Apesar dos
relacionamentos óbvios entre
Cochlospermum e
Bixa que têm levado muitos autores
a agrupá-los em uma única família, muitos ainda tratam a família Cochlospermaceae
Cochlospermum e
Amourexia, que são encontrados nas regiões tropicais de todo
mundo, especialmente nas Américas e na África (POPPENDIECK, 2003; RITTO e
KATO, 1998; JOLY, 1998; BARROSO
et al., 2002).
As plantas desta família são arbóreas ou arbustivas e produz um suco
alaranjado ou vermelho em suas células secretoras, característica marcante da
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família. Folhas alternas caracteristicamente trilobadas, com estípulas, longamente
pecioladas, alternas, palmadas ou compostas-digitadas; caducas, margem
serrilhada ou inteira. Possuem flores andróginas vistosas, de coloração amarela,
pentâmeras, diclamídeas, com simetria radial, dispostas em panículas terminais
paucifloras, com brácteas e bractéolas. Androceu formado por numerosos estames,
abrindo-se por poros apicais. Ovário súpero com três a cinco carpelos, numerosos
óvulos, um só lóculo e placentação parietal. Sementes ricamente pilosas, com
longos pêlos brancos, unicelulares. Fruto seco, capsular loculicida. As espécies do
cerrado podem apresentar um grosso xilopódio (JOLY, 1998; BARROSO
et al.,
A esta família têm sido reportados vários usos medicinais, tais como:
gastrite, queimaduras, indigestão, abscessos, febres e icterícia. Entre seus principais
constituintes fitoquímicos encontram-se os flavonóides, dentre os quais incluem o
kaempferol, quercetina, miricetina e ácido elárgico, sendo que somente este último
O gênero
Bixa, possui quatro espécies, todas conhecidas no Brasil como
Urucum e que reúnem importante valor econômico, além de suas propriedades
medicinais. O gênero
Amoreuxia está principalmente distribuído no México,
ocorrendo, no entanto, alguns raros exemplares na América do Sul e Oeste da Índia
e apresenta sua flor com simetria caracteristicamente zigomórfica, enquanto que o
gênero
Cochlospermum é pantropical e possui simetria actinomórfica, constituindo
esta simetria, a principal diferença entre estes dois gêneros (POPPENDIECK, 2003).
O gênero
Cochlospermum Knuth é composto de 12 espécies,
representado no Brasil por aproximadamente quatro espécies presentes nos campos
cerrados, onde recebem o tradicional nome de algodão-do-campo e pacotê, no
Nordeste (POPPENDIECK, 2003; BARROSO
et al., 2002; JOLY, 1998). Este gênero
é constituído de árvores, arbustos ou subarbustos com tronco subterrâneo lenhoso,
flores actinomorfas, cápsula com 3-5 carpelos, sementes reniformes a espiraladas,
com longos pêlos finos (POPPENDIECK, 2003). Folhas palmatilobadas e serrilhadas
em
C. regium ou arbustos com folhas compostas-digitadas e inteiras em
C.
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Cochlospermum, entre as quais se observa a atividade hepatoprotetora, anti-
malárica, antibacteriana, antitumoral, anti-viral, desintoxicante, anti-leishmania,
antihipertensiva e antidiabética, doenças gastrointestinais, shistosomose e diarréia
(NEGARD
et al., 2005, DIALLO
et al., 1992; DIALLO
et al., 1989; DIALLO,
VANHAELEN e HIKINO, 1987; DIALLO E VANHAELEN, 1987; PRESBER
et al.,
1992; PRESBER
et al., 1987; ALIYU, OKOYE e SHIER, 1995; SÁNCHEZ-
SALGADO
et al., 2007; BENOIT-VICAL, 1999; BENOIT,
et al., 1995; ANTHONY,
FYFE e SMITH, 2005; VONTHRON-SÉNÉCHEAU
et al., 2003; BENOIT-VICAL
et
al., 2003; SOH e BENOIT-VICAL, 2007; OLIVEIRA
et al., 1996; BRUM
et al., 1997;
A partir de levantamento bibliográfico, Almeida
et al. (2005) concluíram
que os óleos essenciais de algumas espécies deste gênero têm se mostrado ricos
em sesquiterpenos e cetonas alifáticas de cadeia longa. E entre os constituintes
químicos mais freqüentemente isolados, citaram os triacilbenzenos e os flavonóides.
Dentre os flavonóides isolados das plantas que compõe o táxon
Cochlospermum foram identificados a miricetina, a quercetina, o acido arjunóico, a
aromadendrina, o kampferol, a naringenina e a apigenina, nas formas livres ou
combinadas formando os glicosídeos naringenina 7-0-glucosideo, apigenina 7-0-
glucosideo, 5,7,4’-trihydroxy-flavan-3-ol e dihidrokaempferol 3-O-glucopiranoside,
entre outros (DIALLO
et al., 1992; LIMA
et al., 1995; ALMEIDA
et al. 2005;
SÁNCHEZ-SALGADO
et al., 2007; COOK e KNOX, 1975).
A presença de polissacarídeos também é comum neste gênero, entre eles
foram isolados a D-galactose, o ácido D-galacturônico e a L-rhamnose em
C.
religiosum, os ácidos urônicos (ácido glucurônico e ácido galacturônico) e açúcares
neutros (arabinose, rhamnose e galactose) em
C. gossipium. Também em
C.
gossipium foram encontrados,
β-d-galactopyranose,
α-d-glucose,
β-d-glucose,
mannose e fructose (OJHA
et al., 2008; JANAKI e SASHIDHAR, 1998; VINOD
et al.,
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1.2 Características da Espécie Cochlospermum regium (Martius & Schrank)
A espécie
Cochlospermum regium (Mart. & Schrank) Pilger, sinonímia
Cochlospermum insigne St. Hill (NUNES, 2000; RITTO e KATO, 1998) é de
ocorrência comum no bioma Cerrado (cerrado
sensu stricto, cerradão, campo limpo,
campo sujo, campo cerrado, mata ciliar), Caatinga e Pantanal, das regiões Centro-
Oeste e Nordeste do Brasil (CAMILO
et al. 2007). Esta espécie por se desenvolver
em todas as regiões de cerrado brasileiro pode ser encontrada com nomes
populares diversos de acordo com a região, tais como: “algodãozinho-do-campo” em
São Paulo, Mato Grosso e Goiás; algodão-cravo e algodão do mato em
Pernambuco; algodoeiro-do-campo, butuá-de-corvo e pacotê no Ceará; e
periquiteira-do-campo na Amazônia (PIO CORRÊA, 1975). Siqueira (1988) cita,
ainda, os nomes algodão-bravo, periquiteira e butuá e Camilo (2008) faz referência a
algodão-do-campo. No Tocantins, a espécie é também conhecida como
algodãozinho-do-campo (UNITINS/MS/MMA – FMT-TO, 1998). Para Kirizawa (1981)
os nomes periquiteira, butuá, butuá-de-corvo e pacotê comuns em regiões do norte
e nordeste devem ser considerados com reserva uma vez que podem referir-se
Na medicina popular as raízes de
C. regium são utilizadas na forma de
fatias, lascas ou pó, no preparo de decoctos, infusos e garrafadas como agentes
antiinflamatórios no caso de artrite reumatóide. O chá de suas raízes tem sido
usado, ainda, no tratamento de inflamações intestinais, uterinas, ovarianas,
prostáticas, afecções da pele, gastrites, úlceras e leucorréia. A planta tem sido
descrita também como depurativa do sangue, para tratamento do colesterol e como
laxativa (NUNES
et al., 2003; NUNES e CARVALHO, 2003; PIO CORRÊA, 1975;
RITTO, 1996; CAMILO, 2008; LIMA
et al. 1995; OLIVEIRA
et al., 1996; ANDRADE,
2008). Siqueira (1988) adverte, entretanto, que a infusão da raiz é empregada como
um perigoso purgativo, devendo-se tomar o cuidado de evitar doses excessivas no
Dessa forma, o presente trabalho tem como objetivo geral contribuir para
o conhecimento dos constituintes fitoquímicos de
Cochlospermum regium (Bixaceae)
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e como objetivos específicos: selecionar a partir de dados etnobotânicos e
etnofarmacológicos a planta a ser estudada; levantar o estado da arte sobre a
espécie selecionada; coletar e identificar botanicamente a espécie; obter extratos
hexânico, diclorometânico, acetato de etila e metanólico de
C. regium; isolar e
identificar os principais metabólitos de
C. regium, por meio de técnicas
cromatográficas e de recristalização; e determinar a estrutura química de compostos
isolados através da espectroscopia por ressonância magnética nuclear (RNM).
MATERIAIS E MÉTODOS
2.1 Materiais E Reagentes Utilizados
Cromatografias:
A cromatografia em coluna (CC) foi realizada, utilizando-se sílica gel tipo
60 Merck, 70-230 e 60-200 Mesh, sílica gel flash (230-400 Mesh) como adsorventes.
A cromatografia em camada delgada analítica (CCDA) foi efetuada sob
placas de cromatofolhas de alumínio como suporte e sílica gel 60 F254 como
Os cromatogramas foram revelados usando a lâmpada ultravioleta (λ =
254 e 365 nm) e solução de vanilina ácida seguido de aquecimento.
Solventes:
Os solventes e reagentes utilizados foram produtos analiticamente puros
QHEMIS, NEON e DINÂMICA: etanol, hexano, diclorometano, acetato de etila, éter
Para a obtenção dos espectros de RMN foram utilizados solventes
deuterados analiticamente puros (clorofórmio e dimetilsufóxido) da marca MERCK e
ALDRICH e como referência interna tetrametilsilano (TMS).
- Bruker Advanced 3 – 500 MHz– 11, 75 Tesla - DQ-UFG
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2.2 Coleta e Identificação
As raízes de
Cochlospermum regium (Bixaceae) foram coletadas numa
região de Cerrado no município de Araguaína, estado do Tocantins. A coleta
realizada no período matutino do dia 16 fevereiro de 2009, foi georrefernciada por
GPS (Global Position Sistem) - sistema de navegação por satélite, (marca Garmin V,
nº de série 73057299), apresentando a seguinte localização geográfica: latitude 07º
16’ 12.5’sul e longitude oeste 048º 15’ 42.4’’.
A espécie foi identificada como
Cochlospermum regium (Mart & Schrank)
Pilger, pela Profª. Drª. Mirley Luciene dos Santos, da Universidade Estadual de
Goiás (UEG), tendo sido uma exsicata da mesma incorporada ao acervo do Herbário
desta Instituição sob nº de registro 5.902.
2.3 Método de Obtenção dos Extratos Brutos
As raízes de
C. regium, após serem lavadas e moídas, foram submetidas
à secagem em estufa com ar circulante, marca Hydrosan, modelo HY-4 BOSDA, à
temperatura de 40ºC por 72 horas e finalmente, trituradas em moinho de faca Tipo
Willye TE – 650, Tecnal®. O material vegetal triturado foi, então, submetido a
processos exaustivos de maceração, à temperatura ambiente, com os solventes
orgânicos hexano, diclorometano, acetato de etila e metanol, nesta ordem crescente
de polaridade. Na Fig. 1 se apresenta o fluxograma deste processo.
Após as extrações, as soluções extrativas foram filtradas e, na seqüência,
os solventes foram removidos sob pressão reduzida, com auxílio de evaporador
rotativo (Büchi® R-205), com controlador de vácuo V-805, acoplado a banho-maria
(Büchi® B-490) mantido a 40ªC e recirculador refrigerado (banho ultratermostatizado
modelo MA-184) marca Marcone®, programado para -2ºC. Dessa forma, foram
obtidos extratos de hexano (CrRH), de diclorometano (CrRD) de acetato de etila
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Figura 1: Fluxograma geral de obtenção dos extratos da raiz de
C. regium
2.4 Isolamento e Purificação dos Constituintes Químicos obtidos de Raiz de
C. Regium
Os extratos hexânico, diclorometânico e de acetato de etila obtidos como
apresentado anteriormente foram submetidos a fracionamento e purificação em
cromatografia por adsorção usando coluna de vidro, empacotada com sílica-gel 60
(60-200 Mesh e 70-230 Mesh) e sílica gel flash (230-400 Mesh). As colunas de
vidros utilizadas foram de diferentes diâmetros e alturas, sendo selecionadas de
acordo com a quantidade do material a ser cromatografado e sua polaridade. Todas
as frações em estágio de semi-purificação foram monitoradas por CCD e reveladas
com luz UV e vanilina ácida, sendo as frações com Rfs semelhantes, reunidas. As
amostras foram submetidas ao processo de eluição com sistemas binários de
solventes de polaridades crescentes, sendo utilizados hexano, diclorometano,
acetato de etila e metanol. A mistura de solventes e o gradiente inicial de eluição
foram determinados em função do melhor Rf obtido em CCD, previamente
executada. Os fluxogramas dos procedimentos experimentais realizados para o
isolamento e purificação dos constituintes químicos presentes na raiz de
C. regium
estão representados nos esquemas apresentados nas figuras a seguir.
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Figura 2: Fluxograma de obtenção das substâncias da fração CrRH de
C. regium.
Figura 3: Fluxograma de obtenção da substância S D da fração CrRD de
C. regium.
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Figura 4: Fluxograma de obtenção das substâncias S E e S F
RESULTADOS E DISCUSSÃO
Identificação das Substâncias Isoladas
Dentre as substâncias isoladas foram identificadas usando a técnica de
ressonância magnética nuclear (RMN) de 1H e 13C as seguintes substâncias:
Substância A:
Isolada a partir do fracionamento cromatográfico do extrato hexânico
(CrRH), conforme metodologia anteriormente descrita na parte experimental
apresentado na Fig 2. O metabólito isolado denominado primariamente de
substância A - SA (7,0 mg), encontra-se em processo de identificação, parecendo,
até o momento, ser uma substância inédita na literatura.
Substâncias B e F: Excelsina
A substância identificada inicialmente como SB (20,0 mg), originada do
fracionamento cromatográfico de CrRH, descrito na metodologia apresentada
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anteriormente na Fig. 2, bem como, a substância denominada inicialmente de SF
(15,0 mg), proveniente da fração CrRAc2-1, conforme descrito anteriormente
(esquematizado na Fig. 4, foram caracterizadas como excelsina (Fig.5). Este
metabólito caracterizado como lignana, até o momento, somente foi isolado em uma
espécie do gênero
Cochlospermum, a
C. vitifolium (ALMEIDA, 2005), sendo,
portanto, a presença desta substância nos extratos de hexano e acetato de etila da
raiz do
C. regium inédita na espécie. Para os referidos autores, o isolamento de
lignóides, é de relevante importância, em virtude das muitas atividades que lhes são
Figura 5: Estrutura química da excelsina.
Substância C: Esteróide, ainda em processo de elucidação estrutural.
Há registros da presença de esteróides no gênero
Cochlospermum.
Almeida
et al. (2005) isolaram uma mistura binária dos esteróides β-sitosterol e
estigmasterol e outra mistura constituída de 3-O-β-glicopiranosil- β-sitosterol e 3-O-
β-glicopiranosil-estigmasterol. Em
C. regium foram isolados a β-sitosterona e o β-
sitosterol na casca do caule (LEAL, 1988).
Substância D: Ácido p-hidroxicinâmico esterificado
diclorometânico (CrRD), de acordo com metodologia relatada e apresentada
esquematicamente na Fig.3, a substância denominada de SD (9,0 mg), foi
identificada como ácido p-hidroxicinâmico esterificado (Fig. 6). Esta estrutura ainda
não está totalmente definida, dados obtidos até o momento apontam a existência
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uma mistura de ácidos p-hidroxicinâmico, provavelmente variando o tamanho da
Leal (1988) isolou o p-hidroxicinamato de triacontanila, (com 28 C) na
casca do caule desta espécie, inferindo tratar-se de substância inédita na literatura.
A presença desta substância ainda não foi relatada na raiz desta planta.
Figura 6: Estrutura química do ácido p-hidroxicinâmico esterificado
Substância E: Naringenina
Inicialmente denominada substância SE (23mg), este constituinte
originado do fracionamento cromatográfico da fração CrRAc1, proveniente do extrato
acetato de etila (CrRAc), conforme descrito anteriormente na parte experimental e
representado no esquema mostrado na Fig. 4, foi identificado como naringenina (Fig.
7). Este flavonóide (uma flavanona) está amplamente distribuído em citrinos
(CARVALHO e GUIDO, 2008) e tem sido relatado para outras espécies do táxon
Cochlospermum (SÁNCHEZ-SALGADO
et al., 2007; COOK e KNOX, 1975;
Em
C. regium, Leal (1998) isolou esta substância na
casca do caule. A presença de naringenina na raiz desta espécie, ainda não havia
sido reportada na literatura. Esta flavanona apresenta uma enorme variedade de
atividades farmacológicas, como o efeito antioxidante, diminuição dos níveis de
colesterol e lipídios no sangue, efeito antiinflamatório e anticarcinogênico
(CARVALHO e GUIDO, 2008; RODRIGUES
et al, 2007).
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Figura 7: Estrutura química da naringenina.
CONCLUSÃO
Do perfil fitoquímico de
C. regium baseado no fracionamento,
isolamento e identificação dos constituintes químicos dos extratos hexânico,
diclorometânico e acetato de etila chegou-se aos seguintes resultados:
As substâncias identificadas como SA, SB e SC, foram isoladas do
extrato hexânico. A substância SA encontra-se em processo de identificação,
parecendo, até o momento, tratar-se de uma substância inédita na literatura. A
substância SB foi identificada como excelsina. A substância SC foi caracterizada
como esteróide e ainda se encontra em processo de elucidação estrutural.
A substância SD foi obtida a partir do extrato diclorometânico, tendo sido
identificada como ácido p-hidroxicinâmico esterificado, pela análise de RMN pôde-se
observar misturas de ésteres na cadeia esterificada. As substâncias SE e SF foram
isoladas do extrato de acetato de etila. Tendo sido a substância SE identificada
como naringenina e a substância SF como excelsina.
REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS
ALIYU, R.; OKOYE, Z. S. C. e SHIER, W. T. The hepatoprotective cytochrome P-450
enzyme inhibitor isolated from the Nigerian medicinal plant
Cochlospermum planchonii is a
zinc salt.
Journal of Ethnopharmacology. vol.48, n. 2, p. 89-97. 1995.
ALMEIDA, S. C. X.; LEMOS, T. L. G.; SILVEIRA, E. R.; PESSOA, O. D. L. Constituintes
químicos voláteis e não-voláteis de
Cochlospermum vitifolium (Willdenow) Sprengel.
Química Nova. v.28, nº 1, p. 57-60, São Paulo. 2005.
Anais do VIII Seminário de Iniciação Científica e V Jornada de Pesquisa e Pós-Graduação
UNIVERSIDADE ESTADUAL DE GOIÁS
ANDRADE, L. S.; SANTOS, D. B.; CASTRO, D. B.; GUILLO, L. A; CHEN-CHEN, L. Absence
of antimutagenicity of
Cochlospermum regium (Mart. and Schr.) Pilger 1924 by micronucleus
test in mice
. Brazilian Journal of Biology. vl.68, n.1. São Carlos. 2008.
ANTHONY, J. P.; FYFE, L. E SMITH, H. Plant active components – a resource for
antiparasitic agents?
Trends in Parasitology. v. 21, n.10, p. 462-468. 2005.
BARROSO, G.M.; PEIXOTO, A. L.; ICHASO, C. L. F.; GUIMARÃES, E. F.; COSTA, C. G.
Sistemática de Angiospermas do Brasil. 2. Ed., p. 218-219. v.1. Ed. Viçosa. 2002. 309 p.
BENOIT, F.; VALENTIN, A.; PELISSIER, Y; MARION, C.; DAKUIO, Z.; MALLIE, M.;
BASTIDE, J.M.; Antimalarial activity in vitro of
Cochlospermum tinctorium tubercle extracts.
Transactinos of the Royal Society of Tropical medicine and Hygiene. 89:217- 218.
1995.
BENOIT-VICAL, F.; VALENTIN, A.; DAB, B.; DAKUYOC, Z.; DESCAMPSD, L. e MALLIÉ, M.
N’Dribala (
Cochlospermum planchonii) versus chloroquine for treatment of uncomplicated
Plasmodium falciparum malaria.
Journal of Ethnopharmacology, 89: 111–114. 2003.
BENOIT-VICAL, F.; VALENTIN, A.; MALLIE, M.; BASTIDE, J.M.; BESSIERE, J.M.
In vitro
antimalarial activity and citotoxicity of
Cochlospermum tinctorium and
Cochlospermum
planchonii leaf extract and essencial oils.
Planta Medica. 65:378-381. 1999.
BRUM, R. L.; HONDA, N. K.; HESS, S. C.; CRUZ, A. B. e MORETTO, E. Antibacterial
activity of
Cochlospermum regium essential oil.
Fitoterapia, vol. 68, no. 1, p. 79. 1997.
CAMILLO, J.; VIEIRA, R. F.; SALOMÃO, A. N.; MUNDIM, R. C. Conservação a longo prazo
de sementes de algodão-do-campo (
Cochlospermum regium (Schrank) Pilger.
XII Talento
Estudantil. Resumo dos Trabalhos. Anais 2007. EMBRAPA. Brasília. 2007.
CAMILO, J.
Germinação e conservação de germoplasma de algodão-do-campo
[Cochlospermum regium (Mart. Ex Schrank) Pilger] – Cochlospermaceae. 2008. 95p.
CARVALHO, D. e GUIDO, L. Desenvolvimento de uma metoidologia para determinação
dnaringenina em frutos e seus derivados. 5 ª Jornada Bebidas e Saúde. UNICER – Bebidas
de
http://www.ibesa.pt/gd/$documentos/5jornadabebidasesaude_14fev2008_id334.pdf . Acesso
em outubro de 2009.
COOK, I. F. e KNOX, J. R. Flavonoids from
Cochlospermum Gillivrae.
Phytochemistry. Vol.
14, p. 2511-2512. 1975.
DI STASI, L. C. Malvales medicinais. In: DI STASI, L.C. e HIRUMA-LIMA, C. A.
Plantas
medicinais na Amazônia e na Mata Atlântica. 2 ed. ver. e ampl. São Paulo: Editora
UNESP, 2002.
DIALLO, B. E VANHAELEN, M
. Apocarotenoids from
Cochlospermum tinctorium.
Phytochemistry, vol. 26, n. 5, p. 1491-1492. 1987.
DIALLO, B.; VANHAELEN, M.; HIKINO, H. Antihepatotoxic actions of
Cochlospermum
tinctorium rizomes.
Journal of Ethnopharmacology, 20:239-243. 1987.
Anais do VIII Seminário de Iniciação Científica e V Jornada de Pesquisa e Pós-Graduação
UNIVERSIDADE ESTADUAL DE GOIÁS
DIALLO, B.; VANHAELEN-FASTRE, R.; VANHAELEN, M.; FIEGEL, C.; JOYEUX, M.;
ROLAND, A.; FLEURENTIN, J. Further studies on the hepatoprotective effects of
Cochlospermum tinctorium rizomes.
Journal of Ethnopharmacology, 36:137-142. 1992.
JANAKI, B. E SASHIDHAR, R. B. Physico-chemical analysis of gum kondagogu
(
Cochlospermum gossypium): a potential food additive.
Food Chemistry, Vol. 61, n. 1/2, p.
231-236, 1998.
JOLY, A.B.
Botânica: introdução à taxonomia vegetal. 12 ed. Companhia Editora
Nacional. p 468. São Paulo. 1998. 777p.
KIRIZAWA, M.
Contribuição ao conhecimento morfo-ecológico e do desenvolvimento
anatômico dos órgãos vegetativos e de reprodução de Cochlospermum regium (Mart
& Schrank) Pilger – Cochlospermaceae. 1981. Tese de Doutorado. Instituto de
Biociências da Universidade de São Paulo. São Paulo, 1981.
LEAL, R. S
. Contribuição ao conhecimento químico de plantas do nordeste:
Plathymenia reticulata Benth e Cochlospermum regium Mart. 1988. 206p. Mestrado.
Universidade Federal do Ceará. Fortaleza. 1988.
LIMA D. P.; CASTRO, M. S. A.; MELLO, J. C. P.; SIQUEIRA, J. M.; KASSAB, N. M. A.
flavanone glycoside from Cochlospermum regium.
Fitoterapia. 66, p.545-546, 1995.
NERGARD, C. S.; DIALLO, D.; INNGJERDINGEN, K.; MICHAELSEN, T. E.; MATSUMOTO,
T.; KIYOHARA, H.; YAMADA, H. E PAULSEN, B. S. Medicinal use of
Cochlospermum
tinctorium in Mali: Anti-ulcer-, radical scavenging- and imunomodulating activities of polymers
in the aqueous extract of the roots.
Journal of Ethnopharmacology. v. 96, n.1-2, p. 255-
269. 2005.
NUNES, G. P.; SILVA, M. F.; RESENDE, U. M.; SIQUEIRA, J. M. Plantas medicinais
comercializadas por raizeiros no Centro de Campo Grande, Mato Grosso do Sul.
Revista
Brasileira de Farmacognosia, v. 13, n. 2. 2003.
NUNES, W. B.
avaliação do potencial mutagênico e/ou recombinogênico do
algodãozinho do campo em células somáticas e germinativas de D. melanogaster.
2000. 112p. Dissertação de Mestrado. Universidade Federal de Goiás. Goiânia. 2000.
NUNES, W. B. e CARVALHO, S. Evaluation of the mutagenic potential of
Cochlospermum
regium in
Drosophila melanogaster male germ cells.
Genetic and Molecular Biology, vol.
26, no. 4, p. 545-549. 2003.
OJHA, A.K.; MAITI, D.; CHANDRA, K.; MONDAL, S.; ROY, D. D. S. K.; GHOSH, K. E
ISLAM, S. S. Structural assignment of a heteropolysaccharide isolated from the gum of
Cochlospermum religiosum (Katira gum).
Carbohydrate Research, 343 p.1222–1231. 2008.
OLIVEIRA, C.C.; SIQUEIRA, J. M.; SOUZA, K. C. B. e RESENDE, U. M. Antibacterial
activity of rhizomes from
Cochlospermum regium: preliminary results.
Fitoterapia, vol. 67,
no. 2, p. 176-177. 1996
OLIVEIRA, C.C.; SIQUEIRA, J. M.; SOUZA, K. C. B. e RESENDE, U. M. Antibacterial
activity of rhizomes from
Cochlospermum regium: preliminary results.
Fitoterapia, vol. 67,
no. 2, p. 176-177. 1996.
Anais do VIII Seminário de Iniciação Científica e V Jornada de Pesquisa e Pós-Graduação
UNIVERSIDADE ESTADUAL DE GOIÁS
PIO CORREA, M.
Dicionário das Plantas úteis do Brasil e das exóticas cultivadas. Rio
de Janeiro: Imprensa Nacional (Ministério da Agricultura, Indústria e Comércio). v.1, 747p.
1975.
POPPENDIECK, H. H. Cochlospermaceae. 2003. In: KUBITZKI, KLAUS; BAYER and
CLEMENS (Orgs.).
Flowering Plants. Dicotyledons: Capparales, Malvales and Non-
betalain Caryophyllales. Series: The Families and Genera of Vascular Plants.
Disponível:http://books.google.com.br/books?id=I8oMV1lsS6kC&pg=PP9&lpg=PP1#.
Acessado em: agosto de 2009.
PRESBER, W.; HEGENSCHEID, B.; FRIEDMANN-ALVERMANN, B.; DORGE, S.; VOIGT,
G.; HILLER, K.; HILS, J. Antiviral activity of
Cochlospermum angolense. Pharmazie, 42:707-
708.1987.
PRESBER, W.; HEGENSCHEID, B.; HERNANDEZ-ALVAREZ, H.; HERRMANN, D. e
BRENDEL, C. Inhibition of the growth of
Plasmodium falciparum and
Plasmodium berghei in
vitro by an extract of
Cochlospermum angolense (Welw.).
Acta Tropica, vol. 50, n. 4, p. 331-
338. 1992.
RITTO, J. L. A
. Caracterização farmacognóstica da droga e do extrato fluido de
algodãozinho-do-campo, Cochlospermum regium (Mart et Schr.) Pilger. 1996. 112p.
Dissertação de Mestrado. Universidade de São Paulo, São Paulo. 1996.
RITTO, J. L. A. e KATO, E. T. M. Estudo morfohistológico de raízes de algodãozinho-do-
campo.
Cochlospermum regium (Mart. et Schr,) Pilger.
LECTA-USF. v. 16, n.2, p.97-109.
Bragança Paulista. 1998.
RODRIGUES, F. C.; OLIVEIRA, T. T.; NAGEM, T. J.; STRINGHETA, P. C.; FERREIRA
JUNIOR, D. B. Efeitos da Naringenina e da Bixina Sobre o Metabolismo Lipídico de Coelhos.
NewsLab
http://www.newslab.com.br/newslab/pdf/artigos81/art03/art03.pdf. Acesso em: 26/10/2009.
SÁNCHEZ-SALGADO, J. C.; ORTIZ-ANDRADE, R. R.; AGUIRRE-CRESPO, F.; VERGARA-
GALICIA, J. ; LEÓN-RIVERA, I. ; MONTES, S.; VILLALOBOS-MOLINA Rua E ESTRADA-
SOTO, S. Hypoglycemic, vasorelaxant and hepatoprotective effects of
Cochlospermum
vitifolium (Willd.) Sprengel: A potential agent for the treatment of metabolic syndrome.
Journal of Ethnopharmacology . v. 109. n.3, p. 400-40. 2007.
UNITINS/MS/MMA – FMT-TO, 1998. Levantamento Etnobotânico e Etnobofarmacológico do
Projeto Bosque da Biodiversidade da Universidade do Tocantins (UNITINS), / Ministério da
Saúde (MS) / Ministério do Meio Ambiente (MMA) – convênio com a Fundação de Medicina
Tropical do Tocantins (FMT- TO). Pesquisa não publicada, pertencente ao banco de dados
da FMT- TO.
VINOD, V. T. P.; SASHIDHAR, R. B.; SREEDHAR, B.; RAO, B. R.; RAO, T. N. e ABRAHAM,
J. T. Interaction of Pb2+ and Cd2+ with gum kondagogu (
Cochlospermum gossypium): A
natural carbohydrate polymer with biosorbent properties.
Carbohydrate Polymers. Article in
Press, Accepted Manuscript. 2009.
VINOD, V. T. P.; SASHIDHAR, R.B.; SURESH,K.I.; RAO, B. R.; VIJAYA SARADHI, U. V. R.
E RAO, T. P. Morphological, physico-chemical and structural characterization of gum
Anais do VIII Seminário de Iniciação Científica e V Jornada de Pesquisa e Pós-Graduação
UNIVERSIDADE ESTADUAL DE GOIÁS
kondagogu (
Cochlospermum gossypium): A tree gum from India.
Food Hydrocolloids. Vol.
22, n. 5. p. 899-915. 2008
VONTHRON-SÉNÉCHEAU, C.; WENIGER, B.; OUATTARA, M.; KAMENAN, F. T.B. A.;
LOBSTEIN, A. BRUN, R. E ANTON, R. In vitro antiplasmodial activity and cytotoxicity of
ethnobotanically selected Ivorian plants.
Journal of Ethnopharmacology. v. 87.n.2-3, p.
221-225. 2003.
Source: http://www.prp.ueg.br/sic2010/apresentacao/trabalhos/pdf/exatas_terra/jornada/constituintes_quimicos.pdf
Simon Thorley QC Practice Area Simon Thorley has an extensive intellectual property practice, particularly in the field of chemical and biotechnology patents but extending to cover all other patent matters, passing off, infringement of trade marks, copyright and designs and breach of confidence. He also advises on EEC law relating to intellectual property and in technical commercial di
© 2002 Lippincott Williams & Wilkins, Inc. Coyne, Patrick J. MSN, RN, CS; Lyne, Marjorie E. MSN, RN, OCN; Watson, Ashby C. MS, RN, OCN, CS Patrick J. Coyne is the clinical director of the Thomas Palliative Care Unit, Virginia Commonwealth University Health System, Richmond, and an instructor in the End of Life Nursing Education Consortium (ELNEC) project. Marjorie E. Lyne is the program dir